domingo, 12 de enero de 2020

Sistema renal

En la determinación de creatinina ¿Qué pasa en el primer minuto después de que se agrega la muestra al reactivo? Antes de realizar la lectura de la absorbancia 1.
La lectura inicial se toma realmente cuando casi no ha ocurrido formación de color. De esta manera, cualquier absorbancia a este tiempo es principalmente ocasionada por interferentes espectrales endógenos. El principal inconveniente de este método es la falta de especificidad, con interferencias tanto positivas (ascorbato, proteínas, piruvato) como negativas (acetato, hemoglobina, N-acetilcisteína) que condicionan un error de medición que es mayor en las muestras con concentraciones inferiores a 177 μmol/L.

Los ensayos cinéticos fueron desarrollados para mejorar el análisis, porque algunos de los cromógenos interferentes se forman rápidamente durante los primeros 20 segundos (s), periodo en el que entran en contacto el reactivo y la muestra (como en el caso del acetoacetato); otros reaccionan lentamente, a los 80-100 s de haber mezclado la muestra y el reactivo (como es el caso de las proteínas). Por lo tanto la señal obtenida entre los 20 y 60 segundos o 20 y 80 es atribuida predominantemente a la reacción entre la creatinina y el picrato.


En la determinación de urea por el método enzimático ureasa-GLDH ¿qué pasa en el primer minuto después de que se agrega la muestra al reactivo? Antes de realizar la lectura de la absorbancia 1.
Como en el caso anterior  los ensayos cinéticos mejoran el análisis, dado que algunos de los cromógenos interferentes se forman rápidamente durante los primeros 20 segundos (s), periodo en el que entran en contacto el reactivo y la muestra; otros reaccionan lentamente después de haber mezclado la muestra y el reactivo. Algunos interferentes son la hemoglobina, niveles elevados de amonio y medicamentos.
Por lo tanto la señal obtenida entre los 20 y los 60 segundos es atribuída predominantemente a la oxidación de NADH a NAD+ ocasionando una disminución en la absorbancia que es proporcional a la cantidad de urea en la muestra.

Tabla 1. Coloración de las orinas.


Tabla 2. Causas comunes del olor en las orinas


Tabla 3. Aspecto de la orina
Aspecto 
características/patologías/sustancias presentes
mpida
No se observan partículas es transparente.
Brumosa
Presencia de pocas partículas
Nebulosa
Presencia de muchas partículas
Turbia
Presencia de muchas partículas, no se puede ver a través de la muestra
Lechosa 
Puede precipitar y formar coágulos

Tabla 3.1 Correlaciones de laboratorio en la turbidez de la orina
Tipo de muestra
Se observan
Orina ácida
Uratos amorfos
Orina alcalina
Fosfatos amorfos y carbonatos
Soluble con calor
Cristales de uratos amorfos y ácido úrico. 
Soluble en ácido acético diluido
Eritrocitos, fosfatos amorfos, carbonatos
Insoluble en ácido acético diluido
Leucocitos, bacterias, levaduras, espermatozoides.
Soluble en éter
Lípidos, Linfa, quilo


Tabla 4. Alteraciones del volumen urinario
Nombre
Características
Patologías
Poliuria
Eliminación de más de 2 L/24 h
Diabetes mellitus o en la diabetes insípida, en la glomerulonefritis crónica, en la pielonefritis, y otras enfermedades
Oliguria
Emisión de 400 ml o menos
Nefrosis o en la glomerulonefritis aguda
Anuria
Emisión menor a 100 ml/24 h
Obstrucción de las vías urinarias o a una severa glomerulonefritis
Nicturia
emisión de orina durante la noche
Disminución: reducción fisiológica de la filtración renal
Aumento: cardiopatías, hipertensión o otras enfermedades renales

Cristales observados en sedimento urinario de acuerdo al pH
pH ácido 
ph alcalino 
Acido hipurico
carbonato de calcio
ácido úrico 
fosfato amorfo de calcio 
bilirrubina
fosfato triple
cistina
biurato de amonio
colesterol

leucina

oxalato de calcio 

Sulfato de calcio

sulfonamidas

tirosina

urato amorfo

urato de sodio



El uroanálisis es en realidad un conjunto de pruebas que dan una idea general acerca de la orina desde el punto de vista físico, químico y microscópico y de este modo permite obtener una idea general del estado de salud del organismo y juega un papel complementario en la detección, diagnóstico y valoración de la enfermedades renales, incluso pudiendo revelar enfermedades asintomáticas o silenciosas. Cabe destacar que la recolección de la muestra es de vital importancia, ya que determina la fidelidad de los resultados y su correcta interpretación.

sábado, 11 de enero de 2020

“ANÁLISIS DEL DNA, OBTENIDO DE SANGRE PERIFÉRICA CON TÉCNICAS DE EXTRACCIÓN Y PURIFICACIÓN”

El DNA, está constituido por dos cadenas de nucleótidos, formando una doble hélice, a manera de escalera enrollada, su estabilidad se debe a la formación de puentes de hidrógeno, además existe la presencia de enlaces entre bases nitrogenadas (A-T; G-C) y enlaces disulfuro. El modo de réplica es semiconservativo.

Obtener DNA relativamente puro y amplificable resulta fundamental para los posteriores usos a los que está destinado: tiene gran importancia en los procesos para el diagnóstico de enfermedades, trastornos genéticos y en el marco de investigación de tipo forense. La tarea demanda una “puesta a punto” de las técnicas de extracción utilizadas, con el objeto de determinar las condiciones ideales en las que se obtenga el máximo rendimiento, por lo que en el procedimiento se debe de tener ciertos cuidados entre los que están la inactivación de nucleasas celulares, trabajar con soluciones y  materiales estériles y, con protección personal (guantes, cubrebocas, cofias) para evitar contaminar las muestras.

En general  los métodos de extracción y purificación de DNA tienen una serie de etapas básicas :
*Obtención de la muestra: Constituye la etapa previa de todo análisi genético.
*Lisis celular: Ruptura de la bicapa lipídica de las membranas celulares (dentro de la cual se destruye membranas nucleares), el tratamiento se realiza con detergentes, agentes quelantes que secuestran cationes estabilizadores de la membrana, choque osmótico,etc. 
*Clarificación: Eliminación de proteínas (son los principales contaminantes del extracto).
* Concentración del DNA: Precipitación con alcoholes y purificación (lavado para eliminar restos de reactivos y solventes que pueden inhibir la Taq polimerasa), y resuspensión.
*Análisis: Cualitativo por electroforesis y cuantitativo por espectrofotometría.

Para muestra de sangre periférica de DNA (CTAB), se han descrito y publicado distintos protocolos. Los métodos de extracción de DNA que realizamos se basan en los principios de las dos alternativas metodológicas básicas las cuales difieren en la etapa de la purificación de las proteínas del extracto; el método que aprovecha las propiedades desnaturalizantes que tiene ciertos solventes orgánicos y el fundamentado en el cambio de solubilidad que experimentan las proteínas cuando son sometidas a modificaciones en la concentración salina del medio. Estos métodos presentan algunas ventajas y desventajas respecto a otros: son económicos, se manejan compuestos químicos tóxicos o contaminantes al ambiente en el caso del método de Fenol - cloroformo y se obtienen considerables cantidades y buena pureza del DNA.

Una vez que se ha realizado la extracción del ADN es necesario revisar la integridad y la cantidad del mismo. La cuantificación del ADN se llevará a cabo por estimación de la intensidad de una banda en la separación por electroforesis en geles de agarosa, en el que el ADN será teñido por el colorante Gel Red y mediante técnicas de espectrofotometría de luz ultravioleta.

La metodología se tomó del manual de Genética Molecular de las páginas 20, 23 - 24, 30- 31, 36, y 42.

Inicialmente es necesario llevar a cabo una lisis para liberar al DNA del interior celular, para lo cual se utilizan los buffers de extracción que contienen 1) detergentes, como sodio dodecilo sulfato (SDS) a una concentración final del 1% o Triton X al 0.5%; 2) una molécula quelante (p. ej. EDTA, 50mM), que tiene cuatro grupos carboxilo y dos grupos amino, cuya forma completamente de-protonizada puede unirse a cualquier complejo metálico en solución, quitando a los cationes de la solución para desestabilizar la membrana celular e inhibir a las DNAsas; 3) sales (p.ej. NaCl 20mM), que forman una capa iónica suave que recubre al ADN protegiéndolo y ayudando a evitar su degradación; 4) Tris-HCl 20mM con pH entre 7.5 y 8.2 para mantener el pH de la solución estable; 5) proteinasa K para degradar proteínas o enzimas (Sambrook, J. 1989).

La absorción de luz UV es una de las características físicas del DNA que permite su identificacion, cuantificacion y la evaluación de su pureza por medio de la espectrofotometría.
Los valores encontrados con respecto a la calidad del DNA obtenido, medidos mediante espectrofotometría son presentados en la TABLA I, donde se presentan la relación de los valores de absorbancia (A260/ A280) y la concentración en ng/uL.



Los nucleótidos tienen un máximo de absorbancia a 260 nm (con una DO=1). Los valores de la relación A260/A280= 1.7 - 1.9 es indicativo de que la muestra de DNA es pura. En nuestro caso los valores oscilan entre 1,8 y 1,9 indicando una buena desproteinización de las muestras de DNA en ambas muestras y una posible contaminación por fenol  en el caso del método de fenol - cloroformo.
En relación a la concentración de DNA expresada en ng/uL se observa que se obtuvo cantidades altas de DNA por el método de Perclorato de sodio en comparación con el de Fenol-cloroformo.


La integridad obtenida del ADN de sangre periférica se muestra en la FIG. 1, en los carriles 9 y 10 respectivamente, en ambas se pueden observar bandas bien definidas y sin degradación. Sin embargo se observa un poco de contaminación en el método de fenol.

El tamaño del poro del gel es predeterminado ajustando su concentración en el gel; entonces a mayor concentración menor tamaño del poro. En la experimentación se utilizó 0.8% de agarosa, una concentración baja  considerando el rango de trabajo 0.7-2%, con este gel de agarosa se obtiene una buena separación (resolución) de grandes fragmentos de ADN (0.5-10 Kb). Dependiendo igualmente de la concentración, nuestro gel de bajo porcentaje, es muy frágil.

miércoles, 18 de diciembre de 2019

Pruebas Bioquímicas Primarias


Shigella

Shigella es un género con cuatro especies: S. dysenteriae, S. flexneri, S boydii y S. sonnei a los cuales se les conoce también como grupo A, B, C y D, respectivamente, de acuerdo a sus propiedades serológicas.  
Los miembros del género Shigella no forman parte de la biota normal intestinal y raramente causan infecciones fuera del tracto digestivo. Ocasionan la disentería bacilar que es una infección ulcerativa, localizada en el colon, caracterizada por dolor abdominal, fiebre y por diarrea con moco y sangre. La severidad de la infección depende de la especie, serovariedad y condiciones nutricionales del hospedero, siendo los cuadros más graves producidos por S. dysenteriae. El modo de transmisión es por dispersión de materia fecal de persona a persona, especialmente en áreas con pobres condiciones sanitarias. 
Los factores de virulencia incluyen la adherencia, y la invasión a las células de la mucosa; escape de las vesículas fagocíticas; dispersión intercelular e inflamación. La toxina Shiga, juega un papel incierto, pero tiene varios efectos en las células de huésped.

El género de Shigella son bacilos Gram negativos inmóviles y delgados, son oxidasa negativa, catalasa positiva, todas fermentan la glucosa, pero no producen gas de la misma, son anaerobios facultativos, pero crecen mejor en condiciones aerobias. Con excepción de S. sonnei fermentadora lenta, ninguna fermenta la lactosa. Esta incapacidad distingue a las shigellas en medio diferencial. Para el aislamiento de Shigella se debe de usar cuando menos dos medios de diferente grado de selectividad. Se puede obtener un buen desarrollo con: gelosa Mac Conkey, gelosa de xilosa-lisina-desoxicolato (XLD) o gelosa entérica Hektoen. Mientras que la gelosa Salmonella-Shiegella, (SS), y la gelosa citrato-desoxicolato (CD) pueden limitar el desarrollo de algunas especies. S. sonnei es inhibida en SS y en CD. S. dysenteriae crece pobremente en SS.

Diferenciación bioquímica y serológica de las especies de Shigella

En las guías internacionales de CLSI y Eucast los antibióticos recomendados para Shigella spp. son Ampicilina, una fluoroquinolona y trimetoprim con sulfametoxazol.

Pruebas bioquímicas para la identificación de Shigella flexneri
Pruebas bioquímicas para la identificación de Shigella flexneri

Pruebas bioquímicas para la identificación de Shigella flexneri

Pruebas bioquímicas para la identificación de Shigella sonnei




Referencias:
EUCAST Clinical Breakpoint Tables v:9.0, 2019-01-01 CLSI 2019, M100, 29th Edition, 282pp

Citrobacter freundii


Citrobacter freundii: son bacilos Gram negativos y anaerobios facultativos.

Es integrante de la familia Enterobacteriaceae, en el manual de Bergey de Bacteriología
Sistemática, las enterobacterias se clasifican en la Sección 5.

Pertenece a la TRIBU IV Citrobactereae, con un sólo género, Citrobacter y tres especies que son C. freundii, C. diversus y C. amalonaticus. 

Pruebas bioquímicas para la identificación de Citrobacter freundii


Pruebas bioquímicas para la identificación de Citrobacter freundii


Se ha aislado de roedores y animales domésticos, ovejas, bovinos, gatos y perros. De las infecciones causadas por esta bacteria destacan las producidas en pacientes hospitalizados. Las infecciones más comunes son las de vías urinaria en donde se aísla en cultivos puro, produce sepsis generalmente polimicrobiana con una mortalidad 45 a 50 %.

Citrobacter freundii presenta resistencia intrínseca a Ampicilina, Amoxicilina/clavulanato, Ampicilina/ sulbactam, cefazolina, cefalotina y Cefuroxima.

Algunos patrones de resistencia vienen dados no por enzimas adquiridas, sino por mutaciones en los genes cromosómicos naturales de especie, por lo general en la región del promotor o en los genes reguladores de su expresión.

Citrobacter freundii tiene una betalactamasa cromosómica inducible de clase C. En las infecciones producidas por este microorganismo (sobre todo en infecciones graves o donde no exista una buena difusión del betalactámico) debe tenerse siempre presente que si se tratan con cefalosporinas de tercera generación o monobactamas, que son activos frente a esta cepa, con frecuencia pueden seleccionarse mutantes que, por alteraciones en los genes
que regulan la producción de la enzima, provoquen la producción de gran cantidad de la misma y, por tanto, esta cepa pase a ser resistente a las carboxipenicilinas, ureidopenicilinas, las cefalosporinas (manteniendo cierta actividad las cefalosporinas de cuarta generación) y monobactamas.


Referencias:
• CLSI 2019, M100, 29th Edition, 282pp
• Livermore DM. β-lactamases in laboratory and clinical resistance. Clin


domingo, 17 de noviembre de 2019

Funcionamiento Renal


Cariotipo humano



Cariotipo humano


Sistema Nervioso


Ulcerosos


1.     Describir que es una úlcera péptica
La úlcera péptica es consecuencia de un desequilibrio entre factores agresores y defensores de la mucosa gastroduodenal, desbalance que permite la acción lesiva o injuria provocada por el ácido y la pepsina sobre esta mucosa.
Desde el punto de vista morfológico histológico, la úlcera péptica es la solución de continuidad de la superficie de la mucosa gastroduodenal debido a la exposición al ácido y a la pepsina, que se extiende en profundidad hasta alcanzar o penetrar la muscularis mucosae.
Desde una perspectiva clínica, una úlcera es la pérdida de la superficie de la mucosa, visible por endoscopía o radiología, que, además de tener una profundidad inequívoca o visible y una extensión mayor que 5 mm en diámetro, se acompaña de un conjunto de síntomas o signos que indican su presencia.
El término enfermedad ulcerosa péptica se refiere a la tendencia a desarrollar úlceras en lugares expuestos a la acción del jugo péptico (ácido y pepsina).

 2.  Investiga modelos farmacológicos que se utilicen para inducir úlcera péptica y los agentes etiológicos que se utilizan asi como el mecanismo de acción de dichos agentes.
Ratas: Para la inducción de lesiones gástricas, se usa la técnica propuesta por Robert y colaboradores, para lo cual se usó alcohol 96% administrado vía orogástrica, mediante canulación, a dosis de 10 mL/kg. El alcohol es una molécula con gran capacidad de incrementar el estrés oxidativo celular. A nivel de los tejidos, incrementa la apoptosis celular, que es uno de los principales tipos de muerte celular, además de inflamación y necrosis, especialmente gástrica y hepática.
Roedor: lesiones gástricas inducidas por estrés por una inmovilización en frío, a una temperatura de entre 5° y 10°C, durante 2 horas, por 5 días.
Con objeto de desarrollar un modelo experimental que simule la úlcera gástrica en humanos, se están llevando a cabo estudios en ratones empleando Helicobacter pylori.
La colonización persistente del epitelio gástrico por este microorganismo constituye un importante factor de riesgo en la aparición de varias enfermedades gastroduodenales. Un proceso patogénico clave en la infección por H. pylori es la inducción de una respuesta inflamatoria mucosal persistente, dada por la activación e infiltración de células mononucleares y neutrófilos, así como sus productos, en la mucosa gástrica infectada.
Además, la estimulación de la transcripción y la síntesis de varias citocinas proinflamatorias (Ej: IL-1ß, IL-2, IL-6, IL-8 y el factor de necrosis tumoral alfa (TNF-a) y antiinflamatorias (Ej: IL-4 e IL-10).

3. Investiga y describe el mecanismo de acción que tiene el alcohol y el Naproxen para producir lesiones o hemorragias en el tracto gastrointestinal
Posiblemente sea la complicación más grave de todas, ocurriendo en el 5 - 10% de los pacientes con úlcera, siendo en el 33% de los casos la primera manifestación de la enfermedad. Se produce cuando una úlcera en la pared anterior de estómago o duodeno penetra y accede dentro de la cavidad abdominal. Esta complicación va a ser más frecuente en varones y aparece con más frecuencia en las úlceras de la pared anterior del duodeno. Se relaciona con el consumo de tabaco, alcohol y sobre todo con el consumo de AINE.

El alcohol produce inflamaciones superficiales de la mucosa del estómago, porque aumenta la producción de ácidos, además de incrementar la necrosis y el estrés oxidativo celular.

Naproxen obstaculiza la secreción de la enzima que transforma los ácidos grasos del metabolismo celular en prostaglandina. Las prostaglandinas (ácidos grasos oxigenados provenientes del metabolismo del ácido araquidónico) son hormonas que protegen la mucosa gástrica porque inhiben la emisión de ácidos. Favorecen también la formación de radicales de oxígeno (formas dañinas del oxígeno) que, a su vez, favorecen la formación de úlceras pépticas.

4. Investigar las propiedades farmacológicas (farmacocinética, farmacodinamia, reacciones adversas e interacciones farmacológicas) del Omeprazol, Ranitidina, Cimetidina, Subsalicilato de bismuto, Hidróxido de aluminio y magnesio

Omeprazol
Farmacocinética y mecanismo de acción: El omeprazol es un bencimidazol sustituido. Es una base débil que se concentra en la célula parietal y es activado en el medio ácido del canalículo secretor. Este metabolito activo es un inhibidor irreversible de la H+ K+ ATPasa y produce una potente y prolongada inhibición de la secreción ácida ante cualquier estímulo (histaminérgica, gastrinérgica o colinérgica). Debido a la inhibición enzimática irreversible, su efecto antisecretor persiste hasta que se sintetiza nueva enzima, proceso que requiere al menos 24 horas.

Reacciones adversas: El omeprazol es un fármaco bien tolerado cuyos efectos secundarios descritos son la aparición de cefalea, diarrea, náuseas y/o dolor abdominal. Debido a su marcada inhibición, se produce una hipergastrinemia secundaria que ha sido objeto de investigación. A altas dosis en algunas ratas, pero no en otras especies, se ha descrito la aparición de hiperplasia celular y tumores carcinoides. Sin embargo, este efecto es similar al producido por la vagotomía y permanece estable a largo plazo, a niveles muy inferiores a los descritos en la anemia perniciosa. En humanos no se han observado lesiones premalignas y estos cambios en ratas no son considerados como relevantes para las personas. A pesar de ello, no se aconsejan tratamientos superiores a las 8 semanas sin control médico (especialmente de pantoprazol, por su mayor potencia)2-4. El omeprazol también inhibe el citocromo P 450 y puede interferir en la disponibilidad de fármacos metabolizados por este sistema, aunque la significación clínica de este efecto farmacocinético ha sido hasta el momento irrelevante.

Interacciones: Se ha descrito una posible disminución de la absorción oral de la cianocobalamina y del ketoconazol con la administración de omeprazol y otros inhibidores de la bomba de protones, debido a los cambios en el pH gástrico. El omeprazol interfiere el metabolismo hepático de drogas como el diazepam, dicumarínicos, fenitoína y ciclosporina Se ha descrito un incremento de los niveles de digoxina (hasta un 22%) en los pacientes que toman de manera concomitante rabeprazol

Ranitidina.

Farmacodinamia. antagonistas de los receptores histaminérgicos H2 son bloqueadores competitivos reversibles de la histamina en estos receptores, particularmente aquellos situados en las células gástricas parietales. Los antagonistas H2 son altamente selectivos, no afectan los receptores H1 y no son agentes anticolinérgicos. Son inhibidores potentes de todas las fases de la secreción ácida gástrica como la secreción causada por la histamina, los agonistas muscarínicos y la gastrina. También inhiben la secreción basal y nocturna y las secreciones estimuladas por los alimentos, insulina, cafeína, pentagastrina y betazol. Además, el volumen y la concentración hidrogeniónica del jugo gástrico son reducidos. La ranitidina no tiene efecto sobre el vaciamiento gástrico y es entre 5 y 12 veces más potente que la cimetidina para el control de la hipersecreción ácido-gástrica, aunque nada indica que una potencia mayor ofrezca alguna ventaja. Los antagonistas H2 son efectivos para el alivio de la sintomatología y en la prevención de las complicaciones de la úlcera péptica.

Farmacocinética: es ampliamente distribuida a través de todos los tejidos y entre 10-19 % se une a las proteínas plasmáticas. Se distribuye en el LCR y leche materna. Se metaboliza en el hígado para dar lugar a 3 metabolitos. Se excreta principalmente por la orina, la mayor excreción urinaria de ranitidina aparece dentro de las primeras 6 h. Aproximadamente 70 % de una dosis IV se excreta por la orina en forma inalterada.

Reacciones adversas: diarrea transitoria moderada, náuseas, vómito, constipación y dolor abdominal, alteraciones de la función hepática fatiga, vértigo, mareos, cefalea, erupciones cutáneas, alopecia, ginecomastia, impotencia y pérdida de la libido.

Raras: pancreatitis aguda, lesión hepática, bradicardia, bloqueo AV, confusión mental, agitación, alucinaciones (sobre todo en ancianos y pacientes muy enfermos), reacciones de hipersensibilidad (fiebre, artralgia, mialgia, anafilaxia), nefritis intersticial o elevación de la creatinina, taquicardia, agranulocitosis, neutropenia, trombocitopenia, pancitopenia, reacciones cutáneas que incluyen la necrólisis epidérmica y el eritema multiforme y casos aislados de anemia aplástica.

Interacciones: antiácidos, antimicóticos, sucralfato: disminuyen absorción de la ranitidina: Antiarrítmicos: incrementa concentración plasmática de procainamida. Hipoglicemiantes orales, warfarina, fenitoína, propranolol, metoprolol, nifedipina, diazepam y teofilina: inhibidor enzimático débil, incrementa sus concentraciones.

Cimetadina:
Farmacocinética y farmacodinamia: inhiben la secreción de ácido gástrico provocada por la histamina y otros antagonistas H2 de una manera competitiva que depende de la dosis; el grado de inhibición es proporcional a la concentración del fármaco en el plasma, dentro de una amplia gama de valores.

Los antagonistas H2 inhiben también la secreción de ácido provocada por la gastrina y, en menor grado, por los agonistas muscarínicos. Es importante observar que los antagonistas del receptor H2 inhiben la secreción basal (en ayunas) y nocturna de ácido, y que este efecto contribuye en mayor grado a su eficacia clínica. Reducen la secreción de ácido estimulada por los alimentos, la distensión fúndica y los diversos agentes farmacológicos. Los antagonistas H2 reducen tanto el volumen del jugo gástrico secretado como su concentración H+.

Se absorbe rápido (aproximadamente, de 60 a 70 %) en el tracto gastrointestinal. La velocidad, aunque no el grado de absorción, se retrasa con los alimentos. Los pacientes jóvenes poseen mejor absorción de la cimetidina que los pacientes ancianos. La unión a proteínas es baja. Se metaboliza en el hígado de 30 a 40 % de la dosis oral. Su vida media normal es de 2 a 3 h. Se ha encontrado en pacientes con quemaduras que varían desde 6 hasta 80 % de la superficie corporal y con función renal normal, el aclaramiento total de cimetidina también aumenta de manera significativa. La concentración máxima se alcanza de 45 a 90 min después de la administración oral. La administración oral proporciona hasta 80 % de inhibición de la secreción ácida gástrica basal, durante un intervalo de 4 a 5 h después de la administración de una dosis de 300 mg. Su eliminación es renal, alrededor de 48 % de una dosis oral se elimina inalterado en 24 h. Además, se excreta también en la leche materna y por vía fecal en 10 %.

Reacciones adversas: diarrea transitoria moderada, náuseas, vómito, constipación y dolor abdominal, alteraciones de la función hepática, fatiga, vértigo, mareos, cefalea, erupciones cutáneas, alopecia, ginecomastia, impotencia y pérdida de la libido.
Raras: pancreatitis aguda, lesión hepática, bradicardia, bloqueo AV, confusión mental, agitación, alucinaciones (sobre todo en ancianos y pacientes muy enfermos), reacciones de hipersensibilidad (fiebre, artralgia, mialgia, anafilaxia), nefritis intersticial o elevación de la creatinina, taquicardia, agranulocitosis, neutropenia, trombocitopenia, pancitopenia, reacciones cutáneas que incluyen la necrólisis epidérmica y el eritema multiforme y casos aislados de anemia aplástica.

Interacciones: analgésicos opiodes, amiodarona, procainamida, propafenona, quinidina, flecainida, lidocaína, metronidazol, cumarínicos, amitriptilina, doxepina, imipramina, nortriptilina, carbamazepina, fenitoína, valpropato, cloroquina, hidrocloroquina, quinina, amprenavir, benzodiacepinas, bloqueadores de los canales de calcio, zolmitriptám, mebendazol, teofilina: inhibe su metabolismo por enzimas microsomales hepáticas del citocromo P-450, con incremento de la vida media en plasma y la toxicidad. Eritromicina, mirtazapina, sertralina, moclobemida, antidepresivos tricíclicos, terbinafina, loratadina, zalcitabina, propranolol, labetalol, metoprolol, ciclosporina, flouracilo, sildefanil: aumenta sus concentraciones plasmáticas. Cefpodoxima, itraconazol, ketoconazol, levotiroxina: reduce su absorción. Aumenta el metabolismo de la cimetidina: rifampicina; retrasa su absorción: octreotida. Metformin: reduce su excreción Sulfonilureas, antipsicóticos, clorpromacina, clozapina: aumenta su efecto. Sertindole: origina arritmias, evitar uso concomitante. Ergotamina, metisergida: aumenta riesgo de toxicidad. Antiácidos, metoclopramida: reducen la biodisponibilidad de la cimetidina hasta 30 %, administrar con una hora de diferencia.

Subsalicilato de bismuto:

Farmacodinamia y farmacocinetica: El Subsalicilato de Bismuto es un compuesto altamente insoluble de bismuto trivalente y ácido salicílico. La porción de salicilato es absorbida rápida y completamente ( más del 90% ) en el tracto gastrointestinal. 
El ácido salicílico que se produce de las reacciones del subsalicilato de bismuto inhibe la síntesis de la prostaglandina responsable de la inflamación intestinal y de la hipermotilidad del mismo. El salicilato puede tener también acciones antisecretoras y estimular la absorción de líquidos y electrolitos a través de la pared intestinal. El bismuto por su parte, se absorbe en forma mínima en el tracto gastrointestinal. Más del 99% del bismuto administrado por vía oral se excreta en las heces. 
A dosis altas  (1.050 mg de subsalicilato  de bismuto), la concentración pico de salicilato en plasma (40.1 mg / ml) se alcanza en 1.8 horas. En 72 horas el salicilato absorbido es excretado por orina en un 95%. 

El subsalicilato en el estómago reacciona con el ácido clorhídrico para producir oxicloruro de bismuto y ácido salicílico. Algo del Subsalicilato de Bismuto pasa al intestino delgado y sigue liberando salicilato debido a la reacción con los aniones presentes en el duodeno (bicarbonato, fosfato y cloruro). El salicilato liberado es absorbido en el intestino delgado y el oxicloruro de bismuto se transforma en subcarbonato de bismuto al reaccionar con los iones de bicarbonato. 
Finalmente, el subsalicilato de bismuto, el oxicloruro de bismuto, subcarbonato de bismuto y fosfato de bismuto reaccionan con sulfuro de hidrógeno, producido por bacterias anaerobias en el colon, convirtiéndose en sulfito de bismuto, el cual es un componente insoluble de color negro, responsable del oscurecimiento de las heces

Reacciones adversas: Constipación intestinal, causa oscurecimiento temporal de la lengua y las evacuaciones. 
El Subsalicilato de Bismuto puede convertirse en el tracto gastrointestinal en sulfito de bismuto, causando un oscurecimiento temporal de la lengua y de las evacuaciones. No debe confundirse  el oscurecimiento de las evacuaciones con melena.

Interacciones: Contiene salicilatos, si el paciente recibe anticoagulantes, el TP alarga; es hipoglucemiante ya que los salicilatos diminuyen los niveles sanguíneos de glucosa por un mecanismo independiente de la insulina; interfiere en la acción de los uricosúricos en el tto contra la gota; si también se administra conjuntamente con AAS y se presenta zumbido de oídos, debe suspenderse su uso.
Los salicilatos afectan las determinaciones urinarias de glucosa y ác úrico y las séricas de potasio; retardan el tiempo de coagulación y alteran el resultado de la determinación del TP; el bismuto puede modificar el resultado de estudios radiológicos abdominales; el consumo crónico de puede alterar las pruebas de función hepática e incrementar los niveles séricos de transaminasas y fosfatasa alcalina.

Hidróxido de aluminio y magnesio
Farmacocinética y farmacodinamia: Los hidróxidos de ALUMINIO y MAGNESIO son los constituyentes más frecuentes de los preparados antiácidos. Los antiácidos reaccionan con el HCl para formar cloruros, agua y dióxido de carbono y neutralizar así al ácido clorhídrico.
Los hidróxidos de ALUMINIO y MAGNESIO son relativamente insolubles; es por esto que no se acumula radical OH hasta concentraciones corrosivas. Por tanto, las combinaciones de hidróxidos de Mg y Al(OH)3, se absorben mal y por tanto tienen un efecto antiácido sostenido, con efectos equilibrados sobre la motilidad intestinal.

La alcalinización del contenido del estómago incrementa la motilidad gástrica por acción de la gastrina. El Al puede relajar el músculo liso del estómago y retrasar el vaciamiento gástrico, efectos a los que se oponen los del Mg. Por tanto, la ingestión concurrente de Al(OH) y Mg(OH) tiene relativamente poco efecto en el vaciamiento gástrico. La alcalinización del contenido gástrico incrementa también la presión en el segmento inferior del esófago, y la depuración esofágica.

En las personas con función renal normal, las acumulaciones modestas subsecuentes de Al y Mg no plantean problema alguno. El Al(OH) y el Mg(OH) que no han reaccionado pueden pasar por el intestino como los compuestos originales. El Al se excreta también en las heces en forma de carbonatos e hidróxidos y el Mg se elimina como sales solubles.

Reacciones adversas: En general, la alcaluria originada por el uso prolongado de cualquier antiácido predispone a nefrolitiasis, al favorecer la precipitación de fosfato de calcio.

Interacciones. No deberá administrarse durante un curso terapéutico en que se administren antibióticos que contengan tetraciclina.






Referencias:
Li FE. Actividad biológica del extracto acuoso atomizado de hojas de Bixa orellana L. (Achiote) en animales de experimentación. Tesis de Maestría. Facultad de Medicina, Universidad Nacional mayor de San Marcos. Lima, Perú. 1999.
Úlceras pépticas, factores exógenos, [en línea] consultada el 04/04/16. Disponible en: http://www.onmeda.es/enfermedades/ulcera_de_estomago-causas-factores-exogenos-1345-4.html
Tomas Vecina, S. (2002). Farmacología de los antiulcerosos. SERVICIO DE URGENCIAS. HOSPITAL MÚTUA DE TERRASSA. BARCELONA